jueves, 12 de marzo de 2015

PRACTICA XXXIX (5/03/15)

 
PRUEBA DE RUMPEL-LEEDE


INTRODUCCIÓN

Esta prueba consiste en evaluar la resistencia que ofrecen las paredes capilares al aumento de la presión intracapilar y la anoxia, se aplica un torniquete en el brazo durante un tiempo determinado, esto originará presión intracapilar y una anoxia que son los responsables de la posible producción de extravasaciones sanguíneas, visibles en forma de petequias

MATERIAL
  • Esfignomanómetro
  • Fonendoscopio
  • Reloj

TECNICA O PROCEDIMIENTO
  • Observar la posible presencia de petequias en la extremidad superio antes del comienzo de la prueba
  • Medir la presión arterial del paciente en su otra extremidad superior y calcular la media entre la presión arterial sistólica y la diastólica
  • Trazar un círculo de unos 5 cm de diámetro en la cara anterior del antebrazo elegido y a unos 5 cm de la flexura del codo
  • Colocar el manguito del esfigmomanómetro en el brazo seleccionado
  • Insuflar aire en el interio del manguito del esfignomanómetro hasta ejercer una presioón sobre el brazo equivalente a la presión arterial media del enfermo que previamente se ha medido
  • Mantener esa presión durante 5 minutos
  • Aflojar y retirar el manguito del esfigmomanómetro
  • Contar el número de petequias que han aparecido en el interior del círculo
OBSERVACIÓN
  • Se aprecian como pequeñas manchas cutáneas de color rojizo constituidas por acúmulos de sangre y que no desaparecen aunque se haga presión
  • Sólo hay que tener en cuenta las petequias que haya mientras la realización de la prueba
  • Negativo: menos de 10 petequias
  • Positivo: más de 20
  • Y dudoso cuando oscila entre 10 y 20
  • Si la aparición de numerosas petequias solo se ve en la cara anterior del antebrazo la prueba es débilmente positiva pero si se extiende a otras zonas de la extremidad superior la prueba es medianamente positiva y si las petequias tienden a confluir, la prueba es fuertemente positiva
  • Positiva: ascenso de la fragilidad capilar, en las trombocitopenias, en la enfermedad de von Willebrand, en el escorbuto y en las púrpuras vasculares
https://www.google.es/search?q=test+de+howell+laboratories&biw=1280&bih=705&source=lnms&tbm=is
ch&sa=X&ei=isIBVefHCIT3avntgaAN&ved=0CAYQ_AUoAQ#tbm=isch&q=petequias&imgdii=_

HOJA DE TRABAJO

A) ¿Cuánto tiempo se deja puesto el esfigmomanómetro en esta prueba?
5minutos

B) ¿Cómo se aprecian las petequias?
Pequeñas manchas cutáneas de color rojizo

C) ¿Cuántas petequias debe contener el círculo para que el resultado sea positivo?
Más de 20

D) ¿En qúe enfermedades hay una prueba de Rumpel-Leede positiva?
Ascenso de la fragilidad capilar, en las trombocitopenias, en la enfermedad de von Willebrand, en el escorbuto y en las púrpuras vasculares

PRACTICA XXXVIII (5/03/15)


DETERMINACIÓN DEL TIEMPO DE PROTROMBINA (TP)


INTRODUCCIÓN

El TP es el tiempo que tarda en coagular un PPP, cuando se pone en contacto con un exceso de calcio y de tromboplastina hística (procede extractos de cerebro o pulmón de hombre o animales, generalmente de conejo o vaca)
Los factores extrínsecos de la coagulación se activan en presencia de tromboplastina cálcica en plasma citratado, el proceso de medición del tiempo de protrombina en una etapa única, mide el tiempo de coagulación del plasma después de la adición del reactivo
También llamado tiempo de Quick ha servido para determinar trastornos de la coagulación la PT es la determinación más frecuente junto con la APTT
La PT es sensible a las anomalías de los factores extrínsecos de la coagulación (factor II, V, VII, X y fibrinógeno) así como sus inhibidores, es además un indicador en enfermedades hepáticas
Se utiliza para la monitorización de las terapias con anticoagulantes
La muestra es plasma obtenido por punción venosa diluido 1/10 en solución de citrato trisódico 3,8%, mezclar la sangre con el anticoagulante, evitando la formación de espuma
Centrifugar la muestra a 1500 x g 15min y transferir el plasma a contenedores de vidrio siliconado o plástico
Los plasmas turbios, ictéricos, lipémicos o hemolizados pueden dar resultados erróneos
La muesstra es estable 2horas a temperatura ambiente (15-25ºC) o 4 horas a 2-8ºC
No usar como anticoagulantes oxalato sódico, EDTA o heparina


MATERIAL
  • Gradilla
  • Cubeta coagulómetro
  • Trocitos de acero para depositr dentro de cada cubeta
  • Pipeta automática para dispensar 100 y 200 microlitros
  • 2 puntas de pipeta para contener 100 y 200 microlitros (amarillas)
  • Coagulómetro
Imagen realizada en el Laboratorio
  • Baño de agua 37ºC
  • 2 tubos de ensayo de plástico
REACTIVOS
  • R: tromboplastina calcica liofilizada, extracto de acetona deshidrata de cerebro de conejo y CaCl2. Tampón y conservantes
  • Opcional: Control normal y contro pathologic
  • RT: reconstituir el contenido con 4ml de agua destilada, mezclar hasta disolver su contenido e incubar 15 min a temperatura ambiente
La sensibilidad de todas las TH comerciales se compara con la de una TH de referencia internacional, se expresa por Índice de Sensibilidad Internacional (ISI), cuanto menor es el ISI de la TH comercial, mayor es su sensibilidad
El ISI de cada reactivo de tromboplastina cálcica comercial puede ser diferente y puede variar de un lote a otro, por lo que debe mirarse en el folleto de instrucciones que se adjunta a cada envase
La tasa de PT (PR) se puede convertir  a su correspondiente valor internacional usando el índice internacional de sensibilidad (ISI), así se obtiene la tasa normalizada internacional INR

TECNICA O PROCEDIMIENTO
  • Calentar a 37ºC el RT y la muestra
Imagen realizada en el Laboratorio
  • RT: mezclar 200 microlitros
  • Incubar 5min a 37ºC
  • Pipetear plasma citratado 100 microlitros
  • Poner en marcha el coagulómetro medir el tiempo de formación del coágulo, inmediatamente después de la adición del reactivo

OBSERVACIÓN
  • Los valores se expresan en %, también en segundos pero lo haremos de forma de porcentaje
INR= TP del plasma del paciente/ TP de plasma control normal elevado ISI
 
  • El TP es el tiempo transcurrido desde la adición de la tromboplastina cálcica hasta la formación del coágulo de fibrina
  • INR cociente corregido con el ISI de la tromboplastina hística
  • El valor en segundos del TP determiando en la muestra se interpola en la curva de actividad de la protrombina preparada, y se halla el porcentaje de activiad de la protrombina que le corresponde
  • El resultado puede expresarse en forma de cociente o proporción (ratio) entre el valor, en segundos del TP de la muestra y de plasma control normal no diluido
  • Valores normales: 11 y 15 segundos
  • % de actividad de la protrombina de plasma normal oscila entre 70 y 100%
  • La ratio de protrombina normal 0,9 y 1,15
  • El tiempo de protrombina está alargado, el % de actividad disminuido y la ratio aumentada en pacientes con déficits de factores de la vía extrínseca, en enfermos sometidos a terapias con dicumarinas y en pacientes con trastornos hepáticos
 
HOJA DE TRABAJO
 
Hemos obtenido 5,1 y de ratio 0,18

PRACTICA XXXVI (3/03/15)


DETERMINACIÓN DEL TEST DE HOWELL


INTRODUCCIÓN

Es la prueba que mide el tiempo que tarda en coagularse un PRP (plasma rico en plaquetas), obtenido a partir de una muestra de sangre con citrato, cuando se vuelve a recalcificar
Se vierte el PRP en un tubo de vidrio, se le añade una solución de cloruro cálcico y se incuba a 37ºC
El resultado del test de Howell es el tiempo transcurrido desde la adición del CaCl2 al PRP hasta la coagulación de éste


MATERIAL
  • 2 tubos de hemólisis de vidrio
  • 4 pipetas graduadas de vidrio de 0,1 ml
  • Baño de agua a 37ºC
  • Cronómetro

REACTIVOS
  • Solución acuosa de cloruro sódico a una concentración del 0,85% p/v (solución salina al 0,85%)
  • Solución de cloruro cálcico 0,025 M (CaCl2 anhidro 0,28g y agua destilada 100ml)
  • Plasma control normal

TÉCNICA O PROCEDIMIENTO
  • Atemperar muestra y reactivos a 37ºC en el baño de agua durante 5 a 15 minutoa
  • Rotular un tubo con la letra M (muestra) y otro con la letra C (control)
  • Introducir los dos tubos en el baño ajustándolo a 37ºC
  • Depositar 0,1 ml de muestra, en el tubo M, y 0,1 ml de control comercial o de pool de plasmas en el tubo C
  • Añadir 0,1 ml de solución salina al 0,85% al contenido de cada tubo
  • Agregar 0,1 ml de CaCl2 0,025 M, y poner en marcha los cronómetros
  • Coger los tubos por su extremo superior y sin sacarlos del agua inclinarlos suavemeente hacia delante y hacia atrás a un ritmo de inclinación por segundo
  • Parar el cronómetro cuando se vea la aparición de un enturbiamiento y de una solidificación de la mezcla de plasma y reactivos contenida en cada uno de los tubos

OBSERVACIÓN
  • Si la muestra es normal el resultado dle test de Howell debe coincidir con el resultado del test efectuado con el control
  • Valores normales comprendidos entre 90 y 130 segundos
  • Tiempo mayor: déficits de factores de la vía intrínseca, hemofilia, en situaciones de afibrinogenemia y de hiperfibrinolisis y en terapia con heparina

HOJA DE TRABAJO

A) ¿Qué tipo de muestra se utiliza en esta prueba?
Plasma rico en plaquetas

B) ¿A qué concentración está el CaCl2 empleado en el test?
0,85% p/v

C) ¿Cuáles son los valores normales del test de Howell?
De 90 a 130 segundos

D) ¿Qué tratamiento puede ser controlado con este test?
Situaciones afibrinogenemia y de hiperfibrinolisis y en terapias con heparina

PRACTICA XXXV (2/03/15)


DETERMINACIÓN DEL TIEMPO DE HEMORRAGIA CON LA TÉCNICA DE DUKE


INTRODUCCIÓN

El tiempo de hemorragia es el tiempo que transcurre desde la sección de un grupo de capilares hasta la formación del trombo blanco plaquetario, se determina efecuando una pequeña herida en la piel y midiendo el tiempo que tarda en cesar de manar sangre a través de la herida

MATERIAL
  • Algodón
  • Portaobjetos
  • Lanceta
  • Cronómetro
  • Un trozo de papel de filtro limpio circular
REACTIVOS
  • Alcohol, desifectante eficaz
TÉCNICA O PROCEDIMIENTO
  • Limpiar el lóbulo de la oreja con un algodon embebido en desinfectante pero sin frotar en exceso, dejar que se seque
  • Pinchar el lóbulo de la oreja cerca de su borde inferior y poner en marcha el cronómetro
  • Sin hacer presión, dejar que salga sangre del lóbulo
  • Recojer con papel de filtro cada 30 segundos la gota de sangre que se presente en el lóbulo, para hacer esto, no se debe tocar la herida con el papel de filtro, para evitar que se rompa el trombo plaquetario que se está formando
  • Desplazar un poco el papel de filtro, entre cada recogida de sangre, para que las gotas de éstas no coincidan sobre una misma zona, cada vez que pasa el tiempo, más pequeñas son las gotas recogidas
https://www.google.es/search?q=tecnic+de+duke&biw=1280&bih=705&source=lnms&tbm=isch&sa=X&ei=eFIBVcqSOIOK
aPODgAg&ved=0CAYQ_AUoAQ#tbm=isch&q=tecnic+de+duke+pinchar+lobulo+oreja&imgr
c=5T_RbbhOphQrCM%253A%3BgLQs9_-kQAcS4M%3Bhttp%253A%252F%252F1.bp.blogspot.com%252F-M2tAjbjvoZI%252FVDnE3kDsrbI%252FAAAAAAAAAiI%252FC8L1QdYJJXA%252Fs1600%252Ftiempo%25252Bde%25252Bsangrado2.jpg%3Bhttp%253A%252F%252Fsandrabenitezzuniga.blogspot.com%252F2014%252F10%252Ftiempo-de-sangrado.html%3B168%3B183
 
 
 
OBSERVACIÓN
  • Se puede calcular multiplicando el número de manchas de sangre por 30 segundos, la hemorragia se cohíbe espontáneamente en 1 a 3 minutos
  • El tiempo de hemorragia está alargado en las púrupues vasculares, en las trombocitopenias, en las trombopatías congénitas, en la enfermedad de von Willebrand y en los sujetos que han tomado ácido acetilsalicílico
HOJA DE TRABAJO

A) ¿De quíen es la técnica que se utiliza para determinar el tiempo de hemorragia?
Duke

B) ¿Cada cuánto tiempo se recoge la gota de sangre que está presente en el lóbulo de la oreja?
30 segundos

C) ¿Cuál es el tiempo de hemorragia normal?
1 a 3 mintuos

D) ¿Qué fármaco aumenta el tiempo de hemorragia?
Ácido acetilsalicílico

(Nota: el día 2 de marzo falté y la realizé el dia 3/03/15)

RESULTADOS OBTENIDOS

Número de manchas de sangre que han quedado marcadas en el papel de filtro:
4 gotas

Tiempo transcurrido, desde que se ha puesto en marcha el cronómetro hasta que se ha parado:
2,5minutos

VALORACIÓN DE LOS RESULTADOS

El tiempo de hemorragia obtenido es: Normal

domingo, 8 de marzo de 2015

PRACTICA XXXIV (2/03/15)


DETERMINACIÓN DE LA VELOCIDAD DE SEDIMENTACIÓN GLOBULAR (VSG)


INTRODUCCIÓN

No realizada el día 2 por la ausencia en clase, pero repetida día 3/03/15
La membrana de los glóbulos rojos tiene una carga electrostática negativa (potencial zeta), ésta da lugar a unas fuerzas de repulsión entre los hematíes que hacen que los eritrocitos tiendan a permanecer en suspensión
Con el tiempo, los glóbulos rojos acaban depositándose debido a la fuerza de la gravedad en el fondo del recipiente que los contiene
3 Fases:
  • Fase inicial de agregación: comienza el apilamiento de los eritrocitos y se produce una sedimentación lenta de los mismos (10min)
  • Fase de sedimentación rápida: apilamiento y sedimientación se produce a una velocidad alta y constante (40min)
  • Fase final de concentración: la sedimentación se enlentece (hasta el final de la segunda hora)

Imagenes realizadas en el Laboratorio
VSG: medición de la rapidez con la que sedimentan los hematíes en la muestra
Cuando los eritrocitos pueden sedimentar con mayor facilidad la VSG aumenta
VSG, los glóbulos rojos tienen a ir cayendo a favor de la fuerza de la gravedad, hacia el inferior del tubo este proceso es lento, pues la fuerza con la que es atraído cada hematíe hacia el fondo del tubo es casi compensada por la fuerza ascendente creada por el plasma al desplazarse hacia arriba
VSG, equivale a la longitud del recorrido que desciende la columna de eritrocitos, desde la parte superior del tubo hacia abajo, en un intervalo de tiempo
La muestra sangre venosa anticoagulada
Lo ideal es recoger la sangre en tubos mezcladores, que contienen 0,4ml de citrato sódico al 3,8% y al que se añade sangre venosa problema, hasta el nivel de 2ml marcado en el tubo mezclador, si sólo se dispone de sangre anticoagualada con EDTA, se puede utilizar una mezcla de 2ml de sangre con 0,5ml de citrato sódico al 3,8% o con 0,5ml de cloruro sódico al 0,85%
Lo importante es que la muestra esté libre de hemólisis

MATERIAL
  • Sistema Eritrosed, consta de:
-Pipetas desechables de vidrio, en su interior albergan un émbolo de aspiración de plástico blanco
-Gradilla especial, con unas perforaciones en su base, paa situar los tubos mezcladores, y en su parte superior y media, permiten soportar verticalmente las pipetas al ser atravesadas por éstas, consta de una corredera superior para atrapar las puntas de los émbolos
  • Tubos mezcladores de polipropileno con tapones de goma perforable
  • Reloj

https://www.google.es/search?q=hematie+fragilidad&biw=1280&bih=705&source=lnms&tbm=isch&sa=X&ei=OzD8VO
qeA_j-sATIsIGgDA&ved=0CAYQ_AUoAQ#tbm=isch&q=velocidad+sedimentacion+globula
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REACTIVOS
  • Se recomienda el citrato sódico al 3,8% que esté contenido en tubos mezcladores apropiados, pero también se puede utilizar el EDTA, no la heparina pues altera el potencial zeta de los hematíes, ni los oxalatos, pues encogen las células sanguíneas
TÉCNICA O PROCEMIENTO
  • Hacerlo a temperatura ambiente, ya que si es mayor asciende la VSG y si es menos, disminuye (debido a que aumenta la viscosidad de la sangre)
  • 1ml vertemos de sangre en el tubo del tapón negro
  • Lo movemos para homogeneizar
  • Se introduce la pipeta especial con la punta azul clara
  • Por capilaridad asciende a 0, para que deje de subir basta con dejar de introducir la pipeta en el tubo
  • Se deja 1h, se toma la medida, porque baja
  • Se deja otra hora y se vuelve a medir
  • Es muy importante que la pipeta esté muy vertical
  • En el reposo no puede ser afectada por vibraciones
Con el paso del tiempo se delimita una zona de separación entre la columna de eritrocitos y el plasma
  • Al final del tiempo de lectura previsto, se mira en la escala graduada de la pipeta, la marca que coincide con el límite de separación entre los hematíes y el plasma
  • Resultado expresado en:
-Longitud en mm del recorrido descendente de la columna de glóbulos rojos en una hora (VSG de la primera hora) y en dos horas (VSG de la segunda hora)
-Índice de Katz, fórmula:
 
Índice de Katz=    VSG 1ªh + VSG 2ªh/2 
                         ______________________
 
                                        2
   Valores normales:
  • Varones: en 1ªh 2-7mm, 2ªh 8-15mm
  • Mujeres: en 1ªh 3-10 mm, 2ªh 12-20mm
índice de katz, el valor normal oscila entre 2 y 16
  • La VSG varía, es más alta en la mujer y aumenta en la vejez y a partir del tercer mes del embarazo, los valores volvería a su normalidad un mes después del parto
  • VSG alta en neoplasias malignas de las células plasmáticas
  • VSG baja enfermades autoinmunes
  • El número, tamaño y forma de los glóbulos también altera la VSG
HOJA DE TRABAJO
 
A) ¿Cómo se llama la carga electrostática negativa de los glóbulos rojos?
Potencial zeta
 
B) ¿Qué anticoagulante es el más apropiado para realizar una determinación de VSG?
Citrato sódico o EDTA
 
C) ¿ A qué temperatura se recomienda practicar la determinación de VSG?
20-25ºC
 
D) ¿A qué tiempos se efectúa la lectura de la VSG?
Cada 1h y despues otra hora
 
E) ¿En qué circunstancias fisiológicas aumenta la VSG?
Anemias
 
RESULTADOS OBTENIDOS
 
Sexo del paciente: Varón
Valor de la VSG a la 1ªh: 0,4
Valor de la VSG a la 2ªh: 0,2
Índice de Katz= 0,4 + 0,2/2  /2 
 
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PRÁCTICA XXXIII (27/02/15)

 
PRUEBA DE LA SACAROSA


INTRODUCCIÓN

Situar los hematíes problema en un medio de baja fuerza iónica (solución sacarosa), los eritrocitos tienden a fijar el complemento, por lo que los glóbulos rojos presentes en la muestra tienen una sensibilidad anormalmente alta al complemento tienden a sufrir la acción de éste, y a lisarse
Muestra sangre venosa completa y anticoagulada con EDTA, por ejemplo
Hemos cogidos dos muestras diferentes, sangre control y sangre problema

MATERIAL
  • Pipetas pasteur
  • Pipetas graduadas ( 1 de 5ml, 2 de 2 ml, 3 de 0,5ml)
  • Pipeta automática (100 microlitros) para hacer 0,1 ml
  • 6 tubos de centrífuga
  • Reloj
  • Centrífuga
  • Espectrofotómetro
  • Cubetas de espectrofotómetro
  • Gradilla
REACTIVOS
  • Solución acuosa de sacarosa (azúcar) a una concentración del 9,24%
  • Sangre control (extraída recientemente)
  • Solución acuosa de amoniaco a una concentración del 0,04%
-0,2ml de hidróxido amónico (NH4OH) al 20%
-99,8ml de agua destilada
  • Suero fisiológico (solución salina al 0,9%)
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TÉCNICA O PROCEDIMIENTO
  • 3 Tubos: uno con las siglas SF (suero fisiológico), otro SC (sangre control) y SP (sangre problema)
  • Rellenar con:
Tubo SF: 1,8 ml de suero fisiológico + 0,2 ml de sangre problema
Tubo SC: 1,8 ml de solución sacarosa + 0,2 ml de sangre control
Tubo SP: 1,8 ml de solución sacarosa + 0,2 ml de sangre problema
  • Agitar los tubos
  • Dejarlos a temperatura ambiente durante 30minutos
  • Centrifugar a 2000 rpm/5min
OBSERVACIÓN
  • Su lectua puede ser visual o espectrofotométrica
  • NO HEMÓLISIS: se observa un botón sedimentario rojizo y un líquido sobrenadante incoloro y transparente
  • SÍ HEMÓLISIS: cuando se advierte la presencia de un líquido rojizo y transparente, en los tubos SF Y SC no tiene que haber hemólisis, ya que estos tubos funcionan como controles negativos
  • Lectura espectrofotométrica:
Tubo TB (tubo blanco): 5ml de solución de amoniaco + 0,3ml de suero fisiológico
Tubo TPr (tubo problema): 5ml de solución de amoniaco + 0,3 ml de sobrenadante del tubo SP
Tubo TPa (tubo patrón): 5ml de solución de amoniaco + 0,3 ml líquido resuspendido del tubo SF
  • Se utiliza el líquido del tubo blanco para poner el aparato a 0 de A, y el líquido del tubo patrón se emplea para determinar la A que corresponde a un 100% de hemólisis
  • Fórmula:
% de hemólisis= A/Am x 100

 
(A: absorbancia del líquido presente en el tubo problema, Am: absorbancia del líquido contenido en el tubo patrón )
  • La prueba de la sacarosa suele ser positiva en la HPM, en esta enfermedad su grado de positividad es de 10-80% de hemólisis
  • Es negativa en la diseritropoyesis congénita tipo II (HEMPAS)
HOJA DE TRABAJO
 
A) ¿A qué concentración se prepara la solución de sacarosa?
9,24%
 
B) ¿Cómo se llama la sacarosa?
Azúcar común
 
C) ¿Cómo se prepara el tubo blanco?
5ml de solución de amoniaco + 0,3 ml de suero fisiológico
 
D) ¿Qué porcentaje de hemólisis suele producirse, en la sangre de la HPN?
10-80% de hemólisis
 
RESULTADOS OBTENIDOS
 
TB= 0,155
TPr= 0,115
TPa= 0,121
 
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viernes, 6 de marzo de 2015

PRACTICA XXXII (25/02/15)


ESTUDIO DE LA FRAGILIDAD OSMÓTICA DE LOS HEMATÍES


INTRODUCCIÓN

El estudio de la fragilidad osmótica de los hematíes valora la resistencia de los eritrocitos a soluciones de presión osmótica decreciente, en condiciones constantes de pH y de temperatura. Se enfrentan los hematíes problema a soluciones tamponadas de cloruro sódico cuya concentración es decreciente a partir de 9 gramos por mil
Cuando los eritrocitos están en contacto con soluciones hipotónicas, penetra agua a través de su membrana y se hinchan. Al hincharse los hematíes, una parte de Hb que contienen puede salir al exterior a través de los poros de su membrana. Si la entrada de líquido es excesiva, los hematíes se rompen y dejan libre toda la Hb que engloban (hemólisis)
Condiciones normales: un eritrocito puede aceptar sin hemolizarse una entrada de agua que incremente su volumen un 70% como máximo
Esta prueba evalúa la capacidad que tienen los glóbulos rojos de soportar un incremento de su contenido acuoso (resistencia osmótica eritrocitaria o ROE, que puede variar de unos a otros en la misma sangre)
La muestra es sangre venosa completa y anticoagulada (anticoagulante: heparina)
No deben haber pasado más de 2h desde la extracción de la sangre hasta su utilización, en el caso de que la muestra se haya conservado a 4ºC puede prolongarse este tiempo a 6h

 
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MATERIAL
  • Pipetas Pasteur
  • Tubos de centrífuga
  • Reloj
  • Centrífuga
  • Espectofotómetro
  • Cubetas de espectofotómetro
  • Gradilla
REACTIVOS
  • Suero fisiológico, preparándose:
9g de cloruro sódico
2,7 de fosfato sódico di-básico
0,2 de fosfato sódico mono-básico
1000ml de agua destilada
  • Agua destilada

TÉCNICA O PROCEDIMIENTO
  • Prepara batería de soluciones de cloruro sódico: (hemos utilizado 8 tubos preparando los 4 primeros y los 4 últimos)
Tubo 1: 0 gotas de agua destilada, 18 gotas de suero fisiológico, 9 concentración obtenida (g/dl)
Tubo 2: 1      "          "         "           17    "           "             "         8,5           "               "
Tubo 3: 2      "          "          "          16    "           "             "           8            "                "
Tubo 4: 3      "          "         "           15   "          "             "          7,5           "               "
Tubo 5: 4      "          "          "          14   "           "              "           7           "                 "
Tubo 6: 5      "           "         "          13   "          "              "         6,5          "                 "
Tubo 7: 6      "          "         "           12    "          "            "            6             "               "
Tubo 8: 7      "           "        "           11     "           "           "          5,5          "                "
Tubo 9: 8      "          "         "           10      "         "            "           5           "                 "
Tubo 10:9     "          "         "            9       "         "            "           4,5        "                 "
Tubo 11: 10             "          "            8       "         "          "             4           "                 "
Tubo 12: 11             "          "            7       "         "           "            3,5        "                 "
Tubo 13: 12             "          "            6      "          "          "               3         "                "
Tubo 14: 13            "           "            5      "          "           "           2,5         "                 "
Tubo 15: 14           "            "            4      "          "           "             2           "                "
Tubo 16: 15            "           "            3      "          "            "          1,5        "                   "
Tubo 17: 16            "          "             2      "          "            "            1          "                 "
Tubo 18: 17            "          "             1      "          "             "        0,5         "                  "
  • Añadir a cada tubo 50 microlitros de sangre completa ( debe hacerse de forma que la gota llegue a la solución de cloruro sódico sin que toque la pared interna del tubo)
  • Agitar los tubos
  • Dejar los tubos en reposo 30 minutos a temperatura ambiente
  • Centrifugar los tubos a 2000 rpm/5min o dejarlos en reposo durante 3 horas
OBSERVACIÓN

  • Aquí observamos la presencia o ausencia de hemólisis en los tubos, utilizaremos el espectofotómetro
  • Lectura visual: se considera que no hay hemólisis cuando en el tubo se observa un sedimento en forma de botón rojizo y un líquido sobrenadante incoloro y transparente. Hay hemólisis parcial cuando se advierte la presencia de un botón sedimentario, que se acompaña de un sobrenadante rojizo y transparente. Y, es hemólisis total cuando sólo se aprecia la existencia de un líquido rojizo y transparente
  • Si los eritrocitos presentes en el botón sedimentario de cualquier tubo se resuspenden mediante agitación, el sobrenadante se enturbiará
  • Espectofotómetro: el procedimiento ya está explicado en anteriores prácticas, por tanto en la presente se recoge de forma separada el líquido contenido en todos los tubos, y se mide la absorbancia ajustando la longitud de onda (540nm) 
  • Blanco: líquido presente en tubo nº1
  • Resultados en forma de %, tubo nº18 corresponderá a un 100%, el más hipotónico, el más hemolizado
  • Fórmula:
%de hemólisis=A/Am x 100
 
(A: absorbancia líquido en el tubo analizado, Am: absorbancia líquido en tubo nº18)
 
  • Hemólisis parcial clara en tubo nº10 (50% de hemólisis)
  • Hemólisis total a nivel del 12,13,14
  • ROE baja: esferocitosis hereditaria, eliptocitosis u ovalocitosis congénita y estomatocitosis hereditaria, en estas enfermedades la superficie de los hematíes está disminuida con respecto a su volumen, éstos toleran peor la entrada de agua y tienen aumentada su fragilidad osmótica
  • ROE sube: la aparición de la hemólisis se retarda y empieza a nivel de tubos que contienen solución salina a una concentración menor que lo prvisto. En talasemia minor y anemia ferropénica, estas células tienen incrementada su superficie en relación con su volumen, toleran mejor la entrada de agua y tienen disminuida su fragilidad osmóstica
 
HOJA DE TRABAJO
 
A) ¿Qué concentración de NaCl tiene el suero fisiológico?
7,4
 
B) ¿En qué porcentaje se puede incrementar normalmente el volumen de los hematíes sin que éstos se rompan?
70%
 
C) ¿Qué sustancia se emplea para anticoagular la sangre en esta prueba?
Heparina
 
D) En esta prueba, ¿cuál es la concentración salina menor a la que se preparan las soluciones?
0,5g/l
 
E) ¿En qué enfermedades se produce una disminución de la ROE?
Talasemia minor y anemia ferropénica
 
RESULTADOS OBTENIDOS
 
Tubo nº1 : 0,149
Tubo nº2: 0,958
Tubo nº3: 1,081
Tubo nº4: 1,206
Tubo nº15: 1,208

Tubo nº16: 1,197
Tubo nº17: 1,203
Tubo nº18: 1,99

Ejemplo tubo nº1: 0,149/1,99 x 100; 7,48%

(Nota: en la práctica hemos cogido los 4 primeros tubos y los 4 últimos. En el espectofotómetro hay que ponerlos del más diluido al más concentrado, se van poniendo el más claro es decir el 1, los hematíes no se habrán roto. Cuando se habla de concentración se habla de color)